产品货号:
ALH075
中文名称:
小量质粒快速提取试剂盒(1.5~4.5mL)
英文名称:
Fast Plasmid Mini Kit(1.5-4.5 ml)
产品规格:
50T|100T|200T
发货周期:
1~3天
产品价格:
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本试剂盒采用改进SDS-碱裂解法裂解细胞,离心吸附柱内的硅基质膜在高盐、低pH值状态下选择性地结合溶液中的质粒DNA,再通过漂洗液将杂质和其它细菌成分去除,最后低盐、高pH值的洗脱缓冲液将纯净质粒DNA从硅基质膜上洗脱。
- 离心吸附柱内硅基质膜全部采用进口世界著名公司特制吸附膜,柱与柱之间吸附量差异极小,可重复性好。克服了国产试剂盒膜质量不稳定的弊端。
- 快速、方便,不需要使用有毒的苯酚、氯仿等试剂,也不需要乙醇沉淀。获得的质粒产量高、纯度好,可以直接用于酶切、转化、PCR、体外转录、测序等各种分子生物学实验。
组分 | 50T | 100T | 200T | 保存 |
RNaseA(10mg/mL) | 150μL | 250μL | 500μL | -20℃ |
溶液P1 | 15mL | 25mL | 50mL | 4℃ |
溶液P2 | 15mL | 25mL | 50mL | 室温 |
溶液P3 | 20mL | 35mL | 70mL | 室温 |
漂洗液WB | 15mL | 25mL | 50mL | 室温 |
洗脱缓冲液EB | 10mL | 15mL | 20mL | 室温 |
吸附柱AC及收集管(2mL) | 50套 | 100套 | 200套 | 室温 |
- 本试剂盒适用菌株为XL-1 Blue和DH5α等核酸酶含量低缺陷型菌株。所用菌株为JM系列、HB101等endA菌株或野生型菌株,核酸酶含量丰富,应购买本公司的高纯度质粒小量快速提取试剂盒。
- 所有的离心步骤均在室温完成,使用转速可以达到13000rpm的传统台式离心机,如Eppendorf 5415C或者类似离心机。
- 溶液P3中含有刺激性化合物,操作时要戴乳胶手套,避免沾染皮肤、眼睛和衣服。若沾染皮肤、眼睛时,要用大量清水或者生理盐水冲洗。
- 提取质粒的量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。一般高拷贝质粒,建议接种单菌落于1.5~4.5mL加合适抗生素的LB培养基,过夜培养14~16个小时,可提取出多达20μg的纯净质粒。如果所提质粒为低拷贝质粒或大于10kb的大质粒,应适当加大菌体使用量,使用5~10mL过夜培养物,同时按比例增加P1、P2、P3的用量,其它步骤相同。
- 得到的质粒DNA可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。OD260值为1相当于大约50μg/mL DNA。电泳可能为单一条带,也可能为2条或者多条DNA条带,这主要是不同程度的超螺旋构象质粒泳动位置不一造成,与提取物培养时间长短、提取时操作剧烈程度等有关。本公司产品正常操作情况下基本超螺旋可以超过90%。
- 质粒DNA确切分子大小,必须酶切线性化后,对比DNA分子量Marker才可以知道。处于环状或者超螺旋状态的的质粒,泳动位置不确定,无法通过电泳知道其确切大小。
- 洗脱液EB不含有螯合剂EDTA,不影响下游酶切、连接等反应。也可以使用水洗脱,但应该确保pH大于7.5,pH过低影响洗脱效率。用水洗脱质粒应该保存在-20℃。质粒DNA如果需要长期保存,可以用TE缓冲液洗脱(10mM Tris-HCl,1mM EDTA,pH8.0),但是EDTA可能影响下游酶切反应,使用时可以适当稀释。
- 第一次使用前请先在漂洗液WB中加入指定量无水乙醇,充分混匀,加入后请及时在方框打钩标记已加入乙醇,以免多次加入!
- 将RNase A全部加入溶液P1中,混匀,每次使用后置于2~8℃保存。
- 将溶液P3放在冰上预冷。
- 取1.5~4.5mL过夜培养的菌液,9000rpm离心30秒,尽可能的倒干上清,收集菌体。
- 收集超过1.5mL菌液,可以离心弃上清后,在同一个1.5mL管内加入更多的菌液,重复步骤1,直到收集到足够的菌体。
- 用250μL溶液P1重悬菌体沉淀,涡旋振荡至彻底悬浮。
- 如果有未彻底混匀的菌块,会影响裂解,导致提取量和纯度偏低。
- 加250μL的溶液P2,温和地上下翻转4~7次使菌体充分裂解,室温放置4分钟。
- 温和地混合,不要剧烈震荡,以免基因组DNA剪切断裂!所用时间不应超过5分钟!以免质粒受到破坏。此时菌液应变得清亮粘稠,如果菌体少,很快清亮粘稠后就可以做下一步,不是一定要准确的5分钟。
- 加350μL溶液P3,立即温和地上下翻转4~7次,充分混匀时会出现白色絮状沉淀。冰上静置3~5分钟,13000rpm离心10分钟,小心取上清。
- 加入溶液P3后应该立即混匀,以免产生SDS的局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀,可再次离心后取上清。
- 将上一步所得上清加入吸附柱AC中(吸附柱放入收集管中),13000rpm离心30~60秒,倒掉收集管中的废液。
- 加入500μL漂洗液WB(请先检查是否已加入无水乙醇!),12000rpm离心30秒,弃掉废液。
- 加入500μL漂洗液WB,12000rpm离心30秒,弃掉废液。
- 将吸附柱AC放回空收集管中,13000rpm离心2分钟,尽量除去漂洗液,以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
- 取出吸附柱AC,放入一个干净的离心管中,在吸附膜的中间部位加50μL洗脱缓冲液EB(洗脱缓冲液事先在65~70℃水浴中加热效果更好),室温放置2分钟,12000rpm离心1分钟。如果需要较多量质粒,可将得到的溶液重新加入离心吸附柱中,离心1分钟。
- 洗脱体积越大,洗脱效率越高。如果需要质粒浓度较高,可以适当减少洗脱体积,但是最小体积不应少于30μL,体积过小降低质粒洗脱效率,减少质粒产量。
- 质粒DNA产量低
- 忘加抗生素,非质粒转化细胞过度生长-建议:
确保固体、液体培养基中都加入了适当的抗生素。 - 细菌培养时间太长,老化细菌开始裂解-建议:
接种过夜培养的新鲜单菌落于加了合适抗生素的培养基中,培养12~16个小时。 - 使用了低拷贝数质粒-建议:
使用高拷贝数质粒,低拷贝数质粒应该适当加大处理体积。 - 细菌培养时间过短,细菌浓度过低-建议:
细菌培养到[A600]吸光值为2~4时,收集菌体。 - 细菌细胞裂解不完全-建议:
- 使用建议的菌体处理量,不要过量;
- 涡旋或者吹打,确保菌体充分重悬于溶液P1中,不应该见到未散开的细菌团块;
- 加入裂解液P2后,应该是粘稠和透明的。
- 使用建议的菌体处理量,不要过量;
- 质粒DNA产量使用分光光度计定量不准确-建议:
分光光度计定量常常偏高,使用琼脂糖电泳/EB染色定量。 - 洗脱效率不高-建议:
请阅读操作步骤8和注意事项6。
- 忘加抗生素,非质粒转化细胞过度生长-建议:
- 未提取到质粒DNA
- 漂洗液WB中忘加无水乙醇-建议:
第一次实验时,在漂洗液WB中加入指定量无水乙醇 - 质粒洗脱液含有较多乙醇,琼脂糖电泳/EB染色定量时质粒DNA漂出上样孔-建议:
- 确保已经做了步骤8,将离心吸附柱的残留乙醇去除;
- 或者适当提高上样缓冲液浓度。
- 确保已经做了步骤8,将离心吸附柱的残留乙醇去除;
- 漂洗液WB中忘加无水乙醇-建议:
- 质粒DNA下游酶切不能切开或者酶切不完全
- 忘记做步骤8,乙醇抑制了酶切反应-建议:
做步骤8,然后空气中晾几分钟,让残留乙醇挥发。 - 一些硅基质膜成分一起洗脱下来,抑制了酶切反应-建议:
将洗脱的回收DNA溶液13000rpm再离心1分钟,小心取上清使用。
- 忘记做步骤8,乙醇抑制了酶切反应-建议:
- 质粒DNA降解或者无质粒DNA
- 核酸酶活性太高-建议:
请选用本公司的高纯度质粒提取试剂盒(附带去核酸酶的去蛋白液PE)
- 核酸酶活性太高-建议:
- 基因组DNA污染
- 裂解时基因组DNA被剪切打断了-建议:
做步骤3时,轻柔颠倒混匀,不要涡旋或者剧烈震荡。
- 裂解时基因组DNA被剪切打断了-建议:
- 质粒DNA缺口或者电泳时超螺旋带前出现变性质粒带
- 步骤3裂解时间过长-建议:
裂解时间不要超过5分钟。
- 步骤3裂解时间过长-建议:
- 产物中含有RNA污染
- 第一次做实验时,忘记将RNase A加入P1溶液,RNase A失活或者起始处理量过量-建议:
- 第一次实验前确保将RNase A加入了溶液P1;
- P1溶液超过3个月的,可加入一些新RNase A;
- 处理量不要过量;
- 菌体重悬于P1溶液后可放置几分钟让RNaseA充分作用后再进行下一步。
- 第一次实验前确保将RNase A加入了溶液P1;
- 第一次做实验时,忘记将RNase A加入P1溶液,RNase A失活或者起始处理量过量-建议:
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